PATOLOGÍA DE SEMILLAS Dra. Agr. Marta Yasem de Romero
La presencia de patógenos en la semilla puede:
Causar pérdidas de rendimiento Afectar su calidad comercial Servir como medio de sobrevivencia y diseminación de muchos patógenos Ser vehículo de introducción del inóculo inicial
Si se siembran semillas enfermas se obtendrán lotes con menor número de plantas y/o con plantas débiles que luego tolerarán menos la acción de otros patógenos o los efectos de factores ambientales adversos.
IMPORTANCIA Conocer la sanidad de las semillas es importante para evitar o reducir la dispersión de los patógenos que afectan al cultivo y contaminan rastrojos y suelos.
En términos generales, los patógenos de semillas son importantes porque: • • • • •
Reducen el poder germinativo Pueden ser llevados a grandes distancias Se introducen en lotes donde no estaban Pueden ser asintomáticos Pueden afectar la parte aérea de la planta, afectando tallos y enfermedades foliares de fin de ciclo en el cultivo de soja, por ejemplo.
• Pueden causar podredumbre de raíces • Pueden disminuir la calidad de granos y semillas • Enrancian aceites y producen micotoxinas • Sobreviven en rastrojos y en el suelo. • Afectan a malezas o plantas voluntarias, perpetuándose de esta manera.
• Mancha ojo de rana (MOR) causada por Cercospora sojina En la zona pampeana la semilla infectada fue una importante vía de entrada en los lotes, además de la utilización de implementos agrícolas sucios contaminados. Una vez que la enfermedad ingresó al lote, se perpetúa en los rastrojos.
Enfermedades que se transmiten por semillas de soja de manera eficiente: • Tizón del tallo y de la vaina, cancro del tallo y podredumbre de la semillas (Phomopsis phaseoli y P. longicolla).Complejo Diaporthe/Phomopsis.
Las semillas infectadas son arrugadas, agrietadas, de menor tamaño, con micelio blanco y a veces picnidios negros (cirrus). Puede ser asintomática. Reduce la germinación y la calidad industrial del grano y produce aceites rancios.
• Phomopsis se considera el principal causante de la baja germinación de semillas de soja, en los tests de germinación en el laboratorio, a temperatura de 25ºC.
Semilla con cirrus de Phomopsis
Foto de otra autoría
Conidios alfa y beta de Phomopsis
Foto de otra autoría
• Tizón foliar y mancha púrpura en semilla (Cercospora kikuchi). Las semillas infectadas tienen manchas rosa pálido a púrpura oscuro o pueden ser asintomáticas. Generalmente no reduce la germinación. Mancha ojo de rana (Cercospora sojina) manchas de color gris a marrón, cubre parcial o totalmente la semilla. Puede reducir la germinación.
Cercospora kikuchii Síntoma más evidente en semillas: manchas típicas de coloración púrpura. Pero no todas las semillas con estos síntomas tienen el hongo. Por otro lado, semillas aparentemente sanas (sin manchas púrpuras) pueden estar infectadas. Solo con tests de sanidad de semillas se puede tener la certeza de la presencia o no de este patógeno.
Conidióforos de Cercospora sojina
Foto de otra autoría
Micelio de Cercospora kikuchi
Foto de otra autoría
• Fusarium spp. (F. semitectum, solani, roseum, graminearum, oxysporum, etc) Anamorfo: Giberella y Nectria. En semillas causa podredumbre. Reduce la germinación. Producen micotoxinas. Fusarium semitectum, dentro de las sps de Fusarium, es la más frecuentemente encontrada (98% o más) en semillas de soja.
Semilla colonizada por Fusarium
Foto de otra autoría
Conidios y conidióforos de Fusarium spp
• Otros patógenos causantes de enfermedades de hojas, tallos y vainas, que pueden ser llevados en semillas de soja infestadas o infectadas son: Colletotrichum truncatum (antracnosis). Reduce la G. Peronospora manshurica (mildiu). Semilla sin brillo, más pequeña, con oosporas. Sclerotinia sclerotiorum (podredumbre húmeda del tallo). Semillas de aspecto yesoso, con micelio blanco. Reduce la G.
• También los habitantes del suelo como Fusarium spp., Rhizoctonia solani, Macrophomina phaseolina, Sclerotium rolfsii, Pythium spp., Phytophthora sojae pueden ser llevados en lotes de semillas contaminados, en formas de propágulos o en semillas infestadas o infectadas.
• INFECCIÓN: establecimiento del patógeno en forma activa. • INFESTACIÓN: contaminación externa por un patógeno, en forma pasiva.
Tipos de asociación semilla/patógeno 1.- El inóculo del patógeno puede estar distribuido dentro de los tejidos de la semilla (infección) Ej. Phomopsis spp, Colletotrichum truncatum. 2.- Puede encontrarse superficialmente, adherido a la semilla en forma externa, como esporos, micelio. Ej. Peronospora manshurica.
Conidios de Colletotrichum truncatum
Foto de otra autoría
Colletotrichum truncatum antracnosis Las semillas son su más eficiente vehículo de diseminación. Síntomas en los cotiledones (necrosis en los mismos después de la germinación). Puede causar deterioro de las semillas, muerte de plántulas e infección sistémica en plantas adultas.
3.- En forma concomitante, como esclerocios, restos de cultivo, partículas de suelo, que se encuentran mezclados con la semilla. Ej. Sclerotium sp, Sclerotinia sp.
Semillas con Sclerotinia
Foto de otra autoría
Semilla con Rhizoctonia
Test de sanidad de semillas Objetivos:
1.- Aspecto cuarentenario: estricto control para evitar la introducción de nuevos patógenos o razas de las ya existentes. 2.- Extender certificados de sanidad de semillas. 3.- Aconsejar el tratamiento de las semillas. 4.- Determinar la calidad de la semilla en almacenamiento, destinada a consumo humano o animal.
Métodos más usados • Algunas contaminaciones superficiales pueden ser detectadas por observación directa de la muestra, pero los métodos más confiables son: • Técnica del papel de filtro (blotter test): se colocan las semillas en cajas de Petri sobre tres capas de papel de filtro humedecido y se incuban una semana a 25º C 2ºC, alternancia de luz cercana a UV y oscuridad (12 horas). Observaciones en lupa. Ventaja: rápida identificación. Limitación: numerosos patógenos no se manifiestan. Frecuentes saprófitos.
Semillas con Fusarium spp
Foto de otra autoría
•
•
•
Agar agua: se colocan las semillas desinfectadas en cajas de Petri con agar agua (medio pobre, para menor contaminación).Incubación de 7 días a 25 2ºC y alternancia de luz cercana a UV y oscuridad (12 horas). Observaciones microscópicas. Limitación: insume mucho tiempo y es costoso. En ambos casos las semillas pueden ser previamente desinfectadas superficialmente con alcohol 70º durante 20”, NaClO 1% durante 1’ y tres lavados con agua destilada estéril de 1’ cada uno. Si se quiere conocer la microflora total de la semilla, no se hace desinfección superficial.
Principales géneros de hongos patógenos de semillas De campo Diaporhe/Phomopsis (D. phaseolorum f.sp. meridionalis -Cancro del tallo y D. phaseolorum var. sojae -Tizón del tallo y de la vaina), Fusarium spp; Colletotrichum spp (Antracnosis de la soja y el poroto), Sclerotinia sclerotiorum (Podredumbre húmeda). De campo pero relacionados con daño mecánico, chinches, heladas tempranas. Cladosporium spp., Alternaria spp., Curvularia spp., etc De almacenaje, humedad y deterioro Penicillium spp.; Aspergillus spp., Mucor spp. y Rhizopus spp.
Conidios de Alternaria
Foto de otra autoría
Semilla con Aspergillus spp
Foto de otra autoría
Semillas con Penicillium spp
Foto de otra autoría
• Aspergillus y Penicillium pueden reducir la germinación de semillas y la emergencia de plántulas en el campo.
• El momento de infección puede ocurrir desde floración hasta madurez. Cuanto más temprano sea la infección, mayor será el nivel de colonización y daño. • El momento de la cosecha también influye en la aparición y frecuencia de semillas infectadas por ciertos patógenos. Ej. Phomopsis.
• De manera semejante a Phomopsis spp., F. semitectum está frecuentemente asociado a semillas que sufrieron atraso en la cosecha o deterioro en el campo.
• En semillas de soja, las bacterias generalmente se encuentran en el tegumento. • Los virus infectan el embrión. La transmisión de virosis por semillas de soja no es común.
EXTRAIDA DEL COMPENDIUM DE SOJA
Fuente. Scandiani, M.M. y Luque, A. G. 2009. Identificación de patógenos en semillas de soja. Análisis de semilla. Suplemento Especial N 2. Editor: Guillermo Rolando. Bs. As. Ploper, L. D. y Yasem de Romero, M. 2011. Manejo integrado de enfermedades. Curso de Posgrado. FAZ-UNT.