Campylobacter spp spp.. diagnóstico y caracterización Maria Rosa Viñas Departamento Bacteriología INEI-ANLIS “C.G.Malbrán”
Especialización en Bacteriología Clínica – UNNE 11-12 Junio 2015
CARACTERISTICAS GENERALES género Campylobacter familia Campylobacteriaceae • • • •
Bacilos Gram negativos. Tamaño: 0,2-0,5 mµ Curvos, espirilados o en forma de S. Flagelo único en uno o en ambos extremos.
• En cultivos de varios días, degeneran a formas cocoides. Campylobacter jejuni Formas cocoides
Campylobacter jejuni
ESPECIES TERMOFILAS Crecen a 42 - 43°C; no crecen a 25°C • *Campylobacter jejuni (subesp. Jejuni / doylei). Agente causal de diarrea, más virulento, resistente a la fagocitosis. • *Campylobacter coli. Produce diarrea más benigna. * Comensales de intestino de vacas, ovejas, cerdos, cabras, perros, roedores domésticos y silvestres y aves. • Campylobacter lari. Aislado de intestino de gaviotas. No está definido el rol patógeno para el hombre. Indoxil acetato (-) y R al ac. nalidíxico. • Campylobacter upsaliensis. Raro aislarlo de casos de diarreas. Produce bacteriemias en HIC. Infección relacionado con animales, especialmente perros y gatos, alimentos como leche no pasteurizada y derivados
Figura 6 b.- Casos positivos para distintos géneros bacterianos según serotipos y serogrupos, notificados en el agrupado. Total país. SE 1 a 53 de 2014, SIVILA
ESPECIES NO TERMOFILAS Crecen a 25°C y 37°C
• Campylobacter fetus subespecie fetus/venerealis: importancia en medicina veterinaria por producir aborto esporádico en el ganado ovino y bovino e infertilidad en bovinos. • C. fetus subesp. fetus: patógeno oportunista para el hombre: infecciones sistémicas en pacientes inmunodeprimidos. * Diferencia entre ambas subespecies: prueba de glicina al 1% • C. fetus subesp. venerealis: aparato genital de vacas causa infertilidad. • C. hyointestinalis: hisopados rectales en pacientes con proctititis, ileítis en cerdos. Puede crecer a 42°C y produce SH2 en TSI.
FISIOPATOGENIA • Microorganismo ingresa por vía digestiva de los alimentos contaminados ó por contacto con animales. • Periodo de incubación: 1 a 7 días. • Cepas con distinto grado de patogenicidad • Dosis infectiva : 500 a 106 microorganismos. • Casos asociados a SGB. En pacientes HIV e IMC : artritis, peritonitis, endocarditis aborto y sepsis neonatal. MECANISMOS DE VIRULENCIA • Invasión de células epiteliales con abscesos en las criptas e infiltrados inflamatorios en la lámina propia (sim. Shigella). • Diarreas inflamatorias y disentéricas. • Atraviesan mucosa intestinal y proliferan a lámina propia y ganglios. Infecciones extraintestinales (sim. Salmonella). • Puede observarse acción citotóxica sobre células Hela y Vero: “cytoletal distending toxin”, distensión y muerte celular.
Síndrome de Guillain-Barré Poliradiculopatia aguda desmielinizante que se asocia a infección previa 10 días ó 3 sem por Campylobacter (1 de cada 2000 infecciones). Cuadro autoinmune por producción de Ac con especificidad (IgG-AntiGM-1): dirigida al LPS de serotipos de Campylobacter jejuni, Ac reaccionan en forma cruzada con gangliósidos de la vaina de mielina que recubre el axón de la célula neuronal. Para asociar Síndrome con infección previa se aconseja realizar: Cultivo: • Coprocultivo seriado (3 muestras) y/ó PCR con IAC Pruebas serológicas (ELISA): • IgG e IgM post infección por Campylobacter generalmente permanecen elevadas 3 ó 4 semanas. • Confirmar aumento de dos o más títulos en serología seriada.
PUNTOS CRITICOS EN EL PROCESO DE IDENTIFICACIÓN DE Campylobacter spp. 1- Toma y remisión de muestras 2 - Obtención de una atmósfera adecuada 3- Suplemento antibióticos-Medios selectivos 4- Conservación de cepas
2- Atmosfera de incubación • Reemplazo de una atmósfera normal por una mezcla de gases apropiados: 10% de CO2 , 5% de O2 ,85% de N2 • Sobres generadores de gases especiales para Campylobacter BBL, Oxoid, Bio-Merieux 5-10% de O2 y 5-12% de CO2 •Sobres generadores de hidrógeno y oxígeno para anaerobiosis : precaución por el hidrógeno. •Jarra con vela 17-19% de O2 y de 2-4% de CO2 (usar suplemento FBP) •Generadores caseros a. Una pastilla de boranato de sodio ( 0,8 gr para una jarra de 3 litros) Una pastilla de Alka Seltzer o Yastá 10 ml de agua destilada. b. Lana de acero Solución ácida de sulfato cúprico: SO4Cu2 5gr, H2O 100 ml, H2SO4 0,33ml y Tween80 0,2 ml
Jarras y generadores de microaerofilia
Sistema de cambio de gases en jarra Bomba de vacío Jarra con manómetro Tubo con mezcla de gases 85% de N2, 10% de CO2 y 5% de O2
3- Suplementos antibióticos • Suplemento Caldo Bolton: Cefoperazona,vancomicina, trimethoprim,cicloheximide • Suplemento Agar Skirrow Vancomicina, trimethoprim, polimixina B • Suplemento Agar CCDA Cefoperazona, Amphotericina B
Epidemiología de Campylobacter Las especies de Campylobacter que causan infección entérica se
encuentran habitualmente como comensales del tracto gastrointestinal de una gran variedad de maníferos y aves, domésticos y de vida libre. Principales fuentes de infección han sido asociadas al contacto con animales, agua o alimentos principalmente de origen aviar contaminados. En países industrializados Campylobacter es el primer agente de diarrea por consumo de carne mal cocida ó contaminación cruzada al preparar los alimentos. En países en vías de desarrollo, Campylobacter es el segundo agente de diarrea, según el lugar geográfico, principalmente en niños
Aislamiento de Campylobacter spp. a partir de materia fecal Muestra de material fecal
Examen microscópico directo en: - Contraste de fase, campo oscuro u óptico - Tinción de Gram
Aislamiento directo
Aislamiento indirecto (optativo)
Placas de medio selectivo Agar Skirrow-CCDA
Enriquecimiento Caldo Bolton (24 h a 42 - 43 ºC)
Incubación 24 - 48 h a 42 - 43 ºC En condiciones de microaerofilia
Identificación presuntiva: -examen microscópico directo (contraste de fase) (tinción de Gram) - prueba de oxidasa - prueba de catalasa
Pruebas bioquímicas: - Hidrólisis del hipurato - Hidrólisis del indoxil acetato - Sensibilidad a NAL y CEF
Identificación final
PCR para C. jejuni/coli/C. lari
Flujograma diagnóstico para Campylobacter spp. , Bacteriología Sanitaria, Dra Isabel Farace
METODO DE FILTRACION PARA LA DETECCION DE Campylobacter EN HECES (*) • El método se basa en la separación de Campylobacter del resto de la flora microbiana presente en las heces, retenidos en la superficie de una membrana de celulosa de 0,45 o 0,66 µm; los bacilos que logran penetrar la membrana van a depositarse sobre una placa de agar sangre. • De esta manera se obtiene un cultivo selectivo, situación que reemplaza a la adición de antibióticos.
• Este método se recomienda para el aislamiento de las especies emergentes: Campylobacter upsaliensis.
IDENTIFICACIÓN PRESUNTIVA DE Campylobacter spp Colonias Colonias sospechosas sospechosas
Morfología típica Movimiento en espiral (en contraste de fase o campo oscuro)
Gram (bacilo gram (-) curvo)
Colonias típicas en Agar Karmali
Oxidasa (+) Catalasa (+)
PROBABLE CAMPYLOBACTER Confirmar con pruebas bioquímicas
Colonias típicas en Agar Skirrow
IDENTIFICACION FINAL • Crecimiento a 42-43°C y a 25°C • Sensibilidad al ácido nalidíxico y cefalotina • Hidrólisis del hipurato • Hidrólisis del indoxil acetato • Producción de ácido sulfhídrico (Medio de Lior)
Hidrólisis del hipurato – Hidrólisis del indoxil acetato
Hidrólisis del hipurato
Hidrólisis del indoxil acetato
Produccion de sulfhídrico (Medio de Lior) Sensibilidad a acido nalidíxico y cefalotina MEDIO DE LIOR
CEFALOTINA Resistente
ACIDO NADÍLIXICO Sensibilidad variable
Temperatura de Desarrollo de las Diferentes Especies de Campylobacter 25°C
37°C
42°C
C. jejuni subsp. jejuni
-
+
+
C. jejuni subsp. doylei
-
+
-/+
C. coli
-
+
+
C. fetus subsp. fetus
+
+
d
C. fetus subsp. venerealis
+
+
-
C. lari
-
+
+
C. upsaliensis
-
+
+
C. hyointestinalis
d
+
d
C. sputorum subsp. sputorum
-
+
+
C. sputorum subsp. bubulus
d
+
-
C. curvus
-
+
+
C. rectus
-
+
d
C. showae
-
-
+
Características Bioquímicas de Especies de Campylobacter Termotolerantes C. jejuni jejuni doyle Hidrólisis del hipurato Oxidasa Producción de catalasa Reducción de nitratos Producción de SH2 R. Ac. nalidíxico R. cefalotina Indoxil acetato TTC Glycina 1%
C. coli C. lari
C. upsaliensis
+
+
-
-
-
+ +
+ +
+ +
+ +
+ -/d
+
-
+
+
+
S R + S/d +
S V +
-/d S R + S +
+ R R S +
S S +
+
V
S: sensible R: resistente d: débil V: variable TTC: cloruro trifenil tretazolium
PRUEBAS BIOQUIMICAS
PCR
Bajo espectro de pruebas bioquímicas para caracterización fenotípica a nivel de las especies más frecuente como agentes de transmisión alimentaria: Campylobacter jejuni/coli Dificultad en la definición de especie por la prueba del hipurato. Confirmación de otras especies de Campylobacter asociadas a infección en humanos
PCR COMO HERRAMIENTA MOLECULAR PARA CONFIMAR LA IDENTIFICACION A NIVEL DE ESPECIE, A PARTIR DEL AISLAMIENTO.
Ensayos de PCR estandarizados para Campylobacter spp. para muestras PCR Campylobacter Termotolerantes
Limite de detección en alimentos 104 UFC / 25 g alimento
Especificidad 100%
PS Lubeck, Lubeck, P Wolffs, Wolffs, SLW On , P Ahrens,P Rädstrom and J Hoorfar.Toward an international Standard for PCRPCR-based detection of foodfood-borne thermotolerant Campylobacter: assay development and analytical validation.Applied and Environmental Microbiology. 69(9): 56645664-69.2003.
Especificidad 100%
A global Salmonella surveillance and laboratory support project of the World Health Organization. Multiplex PCR for differentiation of C. coli and C. jejuni. Laboratory Protocols, Training Course, Feb 2003.
Presentó reacción cruzada con Arcobacter en aislamientos.
D Linton, RJ Owen and J Stanley. Rapid identification by PCR of the genus Campylobacter and of five Campylobacter species enteropathogenic for man and animals. Res Microbiol 147:707147:707-18, 1996.
Aislamientos. Alimentos
PCR Múltiple C. jejuni / C. coli
Limite de detección en alimentos 105 UFC / 25 g alimento
PCR Género
Aislamientos Alimentos Aislamientos Alimentos Incluye IAC
PCR Campylobacter
Aislamientos
Especificidad 100%
PCR Campylobacter fetus en desarrollo
Aislamientos
Especificidad 100%
Campylobacter
lari
Figura. PCR de Campylobacter spp. en presencia del IAC para muestras * Revisión taxonómica en los últimos años Campylobacter cryaerophilus como
Arcobacter cryaerophilus
1 2
3 4
5 6 7
8 9 10 11 12 13 14 M
816 pb 500 pb
Fig 1. Electroforesis en gel de agarosa de los productos amplificados por PCR- género a partir de ADN de muestra de alimento inoculadas con 1 a a 10000 UFC de Campylobacter jejuni/coli en presencia del IAC Calles 1, 2, 3 y 4: ADN de muestra de alimento con 1, 10, 100 y 1000 UFC de Campylobacter jejuni , Calles 5, 6, 7 y 8: ADN de muestra de alimento con 10, 100 ,1000 y 10000 UFC de Campylobacter coli; calle 9 : IAC 10 -6 , calle 10: control del sistema, calle 11: Control positivo Campylobacter jejuni , calles 12 y 13 : IAC 10-7 y 10-8. Calle 15: Marcador de peso molecular 100 bp.
Figura . Electroforesis en gel de agarosa de productos de amplificación obtenidos por PCR- Múltiple de aislamientos de C. jejuni/coli de Argentina Test de Inclusividad 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10 11 12
13 14
M
C.jejuni 773 pb C.coli 364 pb
PCR-Múltiple para C. jejuni/coli. Calles 1, 2, 3, 5, 6, 8 y 9: aislamientos de C.jejuni; calles 4, 7 y 10: aislamientos de C.coli ; calle 11: cepa control negativo Salmonella Enteritidis 2041/06; calle 12: control de reactivos (sin templado); calle 13: cepa control positivo C.coli del WHO-Global Salm Surv-EQAS; calle 14: cepa control positivo de C.jejuni del WHO-Global Salm Surv-EQAS; marcador de peso molecular 100 bp ladder (Invitrogen
4- Métodos de conservación Suspender una ansa de cultivo puro en: • Medio con glicerol: en 0.5 ml de caldo triptosa - fosfato con 5 % de suero equino estéril y 17 % de glicerol, llevar a -70 ºC antes de los 20 minutos. • 85 ml de caldo Brucella + 15 ml de glicerol. Llevar a -70 ºC (3 años) o -20 ºC (1 año). • Medio Wang: Caldo Brucella con 0.5 % de agar y 10 % de sangre, inocular por punción e incubar 24 hs 42 ºC en microaerofilia. Guardar a -20ºC hasta 4 meses.
Resistencia a antimicrobianos – Red WHONETWHONET-ARG (2007--2010) (2007 % de NS en Campylob acter spp. Grupo Campylob acter -Arg Años 2007-2010 (N=834) 100 2007 (n=247)
80
2008 (n=199)
60
%
2009 (n=142)
40
2010 (n=246)
20 0 TET
ERI
CIP
CHL
NIT
AZI
Antibiótico
Campylobacter spp. (2007-2010): 834 aislamientos, alto % de R a CIP (65.7%) y a tetraciclina (TET) (34.2%) y muy bajo % de R a eritromicina (ERI) (4.2%).
Campylobacter spp: spp: porcentaje de resistencia, 2011
Puntos de corte: 1Tabla 4.M45-A2 CLSI 2010. 2 Extraídos de la literatura internacional
spp: CAMPYLOBACTER spp:
Método de Difusión por disco
Drogas a ensayar para cepas provenientes de diarreas: CIPROFLOXACINA Y ERITROMICINA. Adicionales: nitrofurantoinas nitrofurantoinas,, cloranfenicol y tetraciclina
Condiciones del test: Medio: MH enriq. con 5% de sgre. de carnero desfibr. Inóculo: suspención directa de la colonia. 0.5 de McFarland Incubación: a 42°C por 24 horas ó a 36-37°C por 48 hs. en microaerofília (10 % CO2, 5% O2 y 85% N2).
* Interpretacion: Interpretacion: Los ATB que no presentan zonas de inhibición correlacionan bien con CIMs de resistencia, por lo que deben interpretarse como R. Servicio ANTIMICROBIANOS INEI – ANLIS Dr Carlos G. Malbran
Campylobacter spp.: prevalencia y caracterización feno-genotípica de aislamientos de pacientes con diarrea y de sus mascotas en la provincia de La Pampa, Argentina. ISSN 0325-7541 Revista Argentina de Microbiologia (2012) 44: 266-271 Campylobacter jejuni en humanos y mascotas
Dice (Op t:1 .5 0%) (Tol 1 .5% -1.5% ) (H >0 .0% S>0.0%) [0.0% -100 .0 %]
PFGE-SmaI
PFGE- SmaI Fecha aisl.
Especie
Cj145/11 La Pampa
201 1-05-11
C. jeju ni
A RDBRS16.0022 ave
S
S
Cj376/10 La Pampa
201 0-11-10
C. jeju ni
A RDBRS16.0022 canino
S
S
Cj379/10 La Pampa
201 0-11-10
C. jeju ni
A RDBRS16.0022 hu ma no
S
S
Cj49/11
201 1-02-01
C. jeju ni
A RDBRS16.0104 hu ma no
R
S
Cj375/10 La Pampa
201 0-10- 07
C. jeju ni
A RDBRS16.0130 canino
R
S
Cj324/10 La Pampa
201 0-10-04
C. jeju ni
A RDBRS16.0132 hu ma no
R
S
Cj129/11 La Pampa
201 1-04-25
C. jeju ni
A RDBRS16.0128 hu ma no
R
R
Cj130/11 La Pampa
201 1-04-25
C. jeju ni
A RDBRS16.0128 canino
R
R
Cj111/11 La Pampa
201 1-04-14
C. jeju ni
A RDBRS16.0080 ave
R
R
Cj112/11 La Pampa
201 1-04-14
C. jeju ni
A RDBRS16.0080 ave
R
R
Cj116/11 La Pampa
201 1-04-11
C. jeju ni
A RDBRS16.0080 hu ma no
R
R
Cj144/11 La Pampa
201 1-05-11
C. jeju ni
A RDBRS16.0080 felino
R
R
Cj332/10 La Pampa
201 0-10-07
C. jeju ni
A RDBRS16.0101 hu ma no
R
S
100
80
60
Aislamiento Provincia
La Pampa
Nº patrón
Origen Perfil de Resistencia CIP TET
Estudio de la relación genética de aislamientos de Campylobacter jejuni de pacientes con diarrea , 2015 Dice (Opt:1.50%) (Tol 1.5%-1.5%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
100
50
PFGE-SmaI
PFGE-SmaI
Nº de Aislamiento
Ciudad
Fecha de aislam.
Nº patrón en BDN
Cj57/15
Bariloche
2015-02-06
ARDBRS16.0096
Cj62/15
Bariloche
2015-03-04
ARDBRS16.0198
Cj141/14
Neuquén
2014-10-03
ARDBRS16.0185
Cj151/14
Bariloche
2014-09-16
ARDBRS16.0192
Cj197/11
Bariloche
2011-07-05
ARDBRS16.0138
Cj162/10
Bariloche
2010-04-05
ARDBRS16.0074
Cj135/14
Junín de los Andes
2014-08-08
ARDBRS16.0170
Cj147/14
Bariloche
2014-08-07
ARDBRS16.0087
Cj60/15
Bariloche
2015-02-09
ARDBRS16.0022
Cj40/10
Bariloche
2010-01-12
ARDBRS16.0017
Cj98/13
Neuquén
2013-07-25
ARDBRS16.0060
Cj166/14
Neuquén
2014-12-01
ARDBRS16.0195
Cj116/14
Rosario
2014-06-26
ARDBRS16.0084
Cj150/14
Bariloche
2014-09-10
ARDBRS16.0191
Cj162/14
Neuquén
2014
ARDBRS16.0022
Cj174/14
Santa Rosa
2014-07-14
ARDBRS16.0022
Cj131/10
Neuquén
2010-04-04
ARDBRS16.0023
Cj55/15
Bariloche
2015-01-09
ARDBRS16.0197
Cj56/15
Bariloche
2015-02-02
ARDBRS16.0197
Cj 107/14
Neuquén
2014-02-13
ARDBRS16.0021
Cj120/14
C.A.B.A.
2014-08-18
ARDBRS16.0021
Cj132/14
Junín de los Andes
2014-07-13
ARDBRS16.0107
CJ 51/14
Bariloche
2014-04-03
ARDBRS16.0039
Cj138/14
Junín de los Andes
2014-08-16
ARDBRS16.0039
Cj 36/08
Neuquén
2008-06-20
ARDBRS16.0071
Cj76/12
Neuquén
2012-08-07
ARDBRS16.0149
Cj58/15
Bariloche
2015-02-06
ARDBRS16.0168
55/15: asociado a un brote 56/15: aislamiento esporádico * Sensibles a eritomicina y tetraciclina; Resistente a ciprofloxacina
Figura . Dendograma de relación genética de aislamientos de C. jejuni incluidos en la Base de Datos Nacional de perfiles genéticos de Campylobacter spp. En incluye el aislamiento 55/15 en estudio, y el aislamiento 56/15 relacionado al mismo patrón. Coeficiente de Dice, Método UPGMA.
CAMPYLOBACTER spp spp.: .: PRIMEROS ESTUDIOS DE SUBTIPIFICACIÓN DE AISLAMIENTOS CIRCULANTES EN ARGENTINA Y PARAGUAY (COMIC,2009) (BDR Pulse Net) * Dendrograma de relación genética entre los aislamientos de C. jejuni de Paraguay y Argentina Dice (Opt:1.50%) (Tol 1.5%-1.5%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
PFGE-SmaI 100
50
PFGE-SmaI
Origen
año aisl.
especie
Cj 82/08
Cepa
Argentina
Pais
Resistencia
Ciudad
Human
2008-08-07
C. jejuni
ALDBRS16.0001
Cj12/09
Argentina
Neuquen
Human
2009-01-27
C. jejuni
ALDBRS16.0002
Cj121/08
Argentina
Rosario
Animal
2008
C. jejuni
ALDBRS16.0003
Cj21/08
Argentina
Rosario
Human
2008-05-20
C. jejuni
ALDBRS16.0004
Cj132/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-12-23
C. jejuni
ALDBRS16.0005
Cj 35/08
Argentina
Neuquen
Human
2008-06-01
C. jejuni
ALDBRS16.0006
Cj23/08
Argentina
Rosario
Human
2008-05-24
C. jejuni
ALDBRS16.0007
Cj51/06
Argentina
Santa Fe
Human
2005-12-01
C. jejuni
ALDBRS16.0008
Cj121/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-11-19
C. jejuni
ALDBRS16.0009
Cj122/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-11-19
C. jejuni
ALDBRS16.0009
Cj 38/08
Argentina
Neuquen
Human
2008-07-01
C. jejuni
ALDBRS16.0010
Cj120/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-11-19
C. jejuni
ALDBRS16.0011
Cj73/06
Argentina
Mar del Plata
Human
2006
C. jejuni
ALDBRS16.0011
Cj85/06
Argentina
Santa Fe
Human
2006-01-25
C. jejuni
ALDBRS16.0011
CjP25/07
Paraguay
San Lorenzo
Human
2007-03-03
C. jejuni
ALDBRS16.0011
Cj209/08
Argentina
Cordoba
Human
2008-11-05
C. jejuni
ALDBRS16.0012
Cj102/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-07-14
C. jejuni
ALDBRS16.0013
CjP27/07
Paraguay
Asunción
Human
2007-03-07
C. jejuni
ALDBRS16.0014
CjP43/07
Paraguay
San Lorenzo
Human
2007-05-18
C. jejuni
ALDBRS16.0015
Cj115/06
Argentina
Santa Fe
Human
2006-04-04
C. jejuni
ALDBRS16.0016
Cj115/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-11-07
C. jejuni
ALDBRS16.0017
Cj123/06
Argentina
Santa Fe
Human
2006
C. jejuni
ALDBRS16.0018
Cj26/09
Argentina
Bariloche
Human
2009-01-06
C. jejuni
ALDBRS16.0019
Cj120/08
Argentina
Rosario
Human
2008
C. jejuni
ALDBRS16.0020
Cj38/06
Argentina
Cordoba
Human
2005-09-20
C. jejuni
ALDBRS16.0020
Cj9/07
Argentina
Santa Fe
Human
2007
C. jejuni
ALDBRS16.0020
CjP18/07
Paraguay
Asunción
Human
2007-02-05
C. jejuni
ALDBRS16.0020
Cj81/08
Argentina
Resistencia
Human
2008-08-06
C. jejuni
ALDBRS16.0021
Cj1/09
Argentina
Neuquen
Human
2009-01-05
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj122/06
Argentina
Neuquen
Human
2006-05-22
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj3/09
Argentina
Rosario
Human
2009-01-06
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj39/06
Argentina
Cordoba
Human
2006-09-20
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj56/08
Argentina
Capital Federal
Human
2008-07-08
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj72/08
Argentina
Junin
Human
2008-07-29
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj79/08
Argentina
Resistencia
Human
2008-07-04
C. jejuni
ALDBRS16.0022
CjP32/07
Paraguay
Asunción
Human
2007-03-26
C. jejuni
ALDBRS16.0022
Cj 87/08
Argentina
Lanus
Human
2008-08-21
C. jejuni
ALDBRS16.0023
Cj150/08
Argentina
Gral Pico
Human
2008
C. jejuni
ALDBRS16.0024
CjP31/07
Paraguay
Asunción
Human
2007-03-21
C. jejuni
ALDBRS16.0025
Cj4/07
Argentina
Santa Fe
Human
2007-04-24
C. jejuni
ALDBRS16.0026
Cj53/07
Argentina
Cordoba
Human
2007
C. jejuni
ALDBRS16.0027
Cj109/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-10-01
C. jejuni
ALDBRS16.0028
Cj65/07
Argentina
Santa Fe
Human
2007-12-13
C. jejuni
ALDBRS16.0028
Cj35/06
Argentina
Cordoba
Human
2005-09-05
C. jejuni
ALDBRS16.0029
CjP28/07
Paraguay
Asunción
Human
2007-03-09
C. jejuni
ALDBRS16.0030
Cj40/06
Argentina
Cordoba
Human
2005-09-21
C. jejuni
ALDBRS16.0031
Cj16/06
Argentina
Neuquen
Human
2005-07-21
C. jejuni
ALDBRS16.0031
Cj82/06
Argentina
Santa Fe
Human
2006-01-04
C. jejuni
ALDBRS16.0031
Cj4/09
Argentina
Rosario
Human
2009-01-08
C. jejuni
ALDBRS16.0032
Cj 111/08
Argentina
Cordoba
Human
2008-08-09
C. jejuni
ALDBRS16.0033
Cj25/09
Argentina
Bariloche
Human
2008-12-29
C. jejuni
ALDBRS16.0034
Cj98/09
Paraguay
Asuncion
Human
2008-05-13
C. jejuni
ALDBRS16.0035
C 73/08
Argentina
Neuquen
Human
2008-04-01
C. jejuni
ALDBRS16.0036
-Clusters compartidos entre Argentina y Paraguay, indicados con círculos rojos y las letras “cluster” A de Paraguay y con círculo azul el “cluster” F Argentina. ** Perfil electroforético de un aislamiento de C. jejuni recuperado de un caso de SGB
NºPatrón Regional
*
Cluster A
Cluster B
*
Cluster C
* Cluster D
** *
*
Cluster E
Cluster F
B, C, D y E, círculo verde el
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
La implementación de la PCR para la identificación de
Campylobacter spp. y de especie representa una herramienta diagnóstica y de caracterización genotípica, ensayo complementario y factible de ser transferible. Requiere el aislamiento para confirmación. Fortalecer e intensificar la investigación de Campylobacter spp en inmunocomprometidos para un tratamiento adecuado, considerando el perfil de resistencia. Intensificar la vigilancia laboratorial de Campylobacter spp. a nivel nacional (SIVILA) y estudiar virulencia de cepas asociadas a SGB con técnicas moleculares.
¡Muchas gracias!
