Shigella spp. : diagnóstico y caracterización María Rosa Viñas Servicio Enterobacterias INEI-ANLIS “C.G.Malbrán”
Especialización en Bacteriología Clínica – UNNE 12-13 de junio 2015
.
Familia Enterobacteriaceae Género: Escherichia Escherichia coli Escherichia fergusonii Escherichia hermannii Escherichia vulneris Escherichia blattae Género: Shigella Shigella dysenteriae Shigella flexneri Shigella boydii Shigella sonnei
GÉNERO SHIGELLA * Gram negativos, anaerobios facultativos, no esporulados, no móviles de la familia ENTEROBACTERIACEAE, no produce gas a partir de carbohidratos . El género se diferencia en cuatro especies y esta separación se basa en caracteres bioquímicos y antigénicos.
Shigella dysenteriae, serogrupo A: 13 serotipos.(*) Shigella flexneri, serogrupo B: 8 serotipos. (*) Shigella boydii, serogrupo C: 20 serotipos. (*) Shigella sonnei, serogrupo D: 1 serotipo.
(*) La cantidad de serotipos por grupo cambia cuando se definen nuevos
serotipos. (*) En el marco de un grupo de trabajo a nivel internacional se está consensuado la nomenclatura de la nueva variante emergente de S. flexneri
Infección por Shigella spp. La shigellosis está distribuída en todo el mundo, endémica en
países tropicales y de clima templado incidencia en verano.
Riesgo para viajeros que se trasladan hacia áreas endémicas . Brotes en condiciones de hacinamiento y falta de saneamiento en cárceles, hospitales psiquiátricos, geriátricos, campamentos y a bordo de embarcaciones. Shigella: único huésped el ser humano y a los primates. Se transmite de persona a persona por la vía fecal-oral o por alimentos contaminados, el vector de transmisión son las moscas y/ o aguas estancadas. Altamente infecciosa por la ruta oral, la ingestión de 10 a 100 organismos. Shigella no es de notificación obligatoria pero a través del SNVS de Argentina, módulo laboratorio SIVILA, permite una vigilancia del mo.
La mayor parte de los casos positivos para diarreas bacterianas se debieron a Shigella (4116) con predominio de S. flexneri , seguido por Salmonella , Escherichia coli . SIVILA 2014
SHIGELLOSIS – PRESENTACION CLINICA Diarrea acuosa asociada con vómitos y deshidratación leve a moderada. Disentería caracterizada por pequeños volúmenes de materia fecal con sangre, mucus y dolor abdominal. Disentería: consecuencia de la invasión de la mucosa colónica, multiplicación y muerte celular, inflamación y ulceración de la mucosa con la consiguiente aparición de sangre en materia fecal.
Complicaciones posteriores a una Shigellosis :
bacteriemia, convulsiones y problemas neurológicos, artritis reactiva ( pacientes inmunocomprometidos, niños y ancianos) .
Infección por Sh. dysenteriae serotipo 1: tasa de letalidad del 20% causando las más severas disenterías debido a su potente toxina Shiga , exotoxina termolábil que afecta el intestino y el SNC, y contribuir a la gravedad extrema de la infección.
U1
INVASION POR SHIGELLA
GENE GLOBE PATHWAYS
Diapositiva 7 U1
Usuario, 28/08/2014
FLUJOGRAMA PARA EL AISLAMIENTO DE Shigella (Muestra clínica) MUESTRA (Hisopo en Cary Blair)
Observación en fresco
Coloración de Gram
Suspensión salina
MacConkey, EMB, SS, Hektoen, XLD
Colonias típicas
TSA
P. Bioquímicas
TSI
Serotipificación
LIA
• El género Shigella es un género bioquimicamente poco reactivo; presenta las propiedades indicadas en TABLA IV. Las placas de medio selectivos y diferenciales : agar McConkey y agar EMB a 37ºC, 18 a 24 horas. Las colonias características, se siembran en estría de TSA , TSI y LIA, a 37ºC , 18 a 24 hs. •TSI: -K/A, LIA: -K/A pruebas mínimas Prueba Bioquimica
Shigella spp.
SH2
-
Glucosa (gas)
-
Glucosa (ácido)
+
Movilidad
-
Citrato Simmons
-
Adonita (fermentación)
-
Malonato (utilización)
-
Voges-Proskauer
-
Arginina dehidrolasa
-
Lisina decarboxilasa
-
Ornitina decarboxilasa
-ó +
Salicina (fermentación)
-
Lactosa (fermentación)
-
Urea (hidrólisis)
-
Sacarosa (fermentación)
-
Xilosa (fermentación)
-
Fenilalanina deaminasa
-
Inosita (fermentación)
-
Rojo de metilo
+
+ 90% o más en 1-2 días; - + 90% o más en 1-2 días
(S. sonnei)
ATIPIAS
TSI alcalino/ácido sin gas, LIA alcalino/ácido, SIM (- v -), acetato negativo, urea negativa. Serología para Shigella: pobre o negativa; estos cultivos se deben calentar a 100º C. TSI alcalino/ácido con gas, LIA alcalino/ácido, SIM (- - -), acetato negativo, urea negativa. Se debe realizar serología para Shigella, porque hay ciertos serotipos de Sh. dysenteriae, Sh flexneri y Sh. boydii que pueden producir gas a partir de glucosa.
Shigella sonnei ONPG negativas, lactosa -
TABLA . Caracteres Bioquímicos Diferenciales entre especies de Shigella
Especie
• •
D-Manitol
ONPG
Ornitina decarboxilasa
*Sh. dysenteriae
-
-
-
**Sh. flexneri
+
-
-
***Sh. sonnei
+
+
+
Sh. boydii
+
-
-
S. dysenteriae 1 son ONPG +, ** S. flexneri fermenta manitol, excepciones: S. flexneri 4 y 6 variedades S. flexneri manitol-negativo , *** S. sonnei ONPG – Utilización de Azúcares, pruebas orientativas para la diferenciación a nivel de especie de Shigella : Dulcita, Xilosa, Ramnosa, Rafinosa y Glicerol (Tabla con % ) Ej. S. boydii utiliza xilosa ó ducitol, glicerol , S sonnei utiliza rafinosa , rhamnosa, permite diferenciar de otros subgrupos ó especies
TABLA . Caracteres Bioquímicos Diferenciales entre Shigella y E. coli. Prueba Bioquímica Indol
Shigella
Escherichia coli
-o+
+
-
+, (+), -
-o+
+, (+), -
Arginina dehidrolasa
- , +, (+)
(+), +, -
Mucato (utilización)
-
+
Acetato (utilización)
-
+ , (+)
Citrato Christensen
-
+, (+), -
Glucosa (gas)
-
+
Lactosa (fermentación)
- , (+)
+
Sacarosa (fermentación)
- , (+)
+, (+), -
Salicina (fermentación)
-
+, (+), -
Movilidad
-
+ó-
Lisina decarboxilasa Ornitina decarboxilasa
+ 90% o más en 1-2 días; (+) luego de 3 o más días; - 90% o más, + o – mayoría de cepas positiva, - o + mayoría de cepas negativa
Edwards and Ewing´s Identification of Enterobacteriaceae”, 4th. Edition
* Las pruebas del acetato y mucato tienen considerable valor para diferenciar ambos géneros: Prueba Bioquímica
*Shigella
Escherichia coli
**Escherichia coli inmóvil
Acetato (utilización)
-
+
+ ó -
Mucato (utilización)
-
+
+ ó -
Glucosa c/gas
-
+
-
-, -, -
-,+, +
- ,+, - ó -, -, -
-
- ó+
+ó -
SIM Citrato Christensen
+ : 90% o más en 1-2 días; - : 90% o más, + o – mayoría de cepas positiva, - o + mayoría de cepas negativa *S. flexneri 4: suele utilizar acetato como fuente de carbono positivo 2-7 días reacción débil (confirmar por PCR) ** biotipos E.coli no móviles anaerógenos, lactosa - en TSI : K/A similar a Shigella
FIGURA Flujograma de Serotipificación para
Shigella spp.
Cepa con características bioquímicas deShigella Estria en TSA Aglutinación con solución fisiológica Negativa
Positiva
Aglutinación con OShB Negativa
Positiva
Cepa rugosa Sh. flexneri(se prueban serotipos 1 a 6)
Aglutinación con OShD Negativa
Positiva
Sh. sonnei
Aglutinación con OShC Negativa
Positiva
Sh. boydii(se prueban serotipos indol + y- -
Aglutinación con OShA Negativa Calentar (ver pág.13)
Positiva
PCR Múltiple para S. flexneri
Sh. dysenteriae(se prueban serotipos indol + y-
Shigella spp.: primer agente de origen bacteriano por SIVILA y asociado a brotes comunitarios.
Mejorar la detección de fuente de infección con técnicas sensibles y/ó medidas oportunas . En el marco de la RND * Uso del antisuero AA479 como screening de este nuevo subserotipo de S. flexneri cuya sero -prevalencia aumentó en el país en los últimos años.
Vigilancia desde el LRN: S. flexneri atípicas (no tipables): 1,7% en 2008 y 16% en 2009, reconocidos por 1ra vez en tres provincias (N, RN y La Pampa) y luego en el resto del país alcanzando un 30,4% en 2010. Distribución de serotipos de S. flexneri LNR, Enero 2007 a Diciembre 2010 N Aislamientos de Shigella flexneri
Serotipos de S. flexneri
400
S. flexneri atípicas
300
S. flexneri 2
200
S. flexneri 3
100
S. flexneri 1 S. flexneri 6
0 2007
2008
2009
2010
S. flexneri 4, 5, X e Y
Caracterizar feno-genotípicamente una selección de aislamientos de S.flexneri atípicos emergentes en Argentina y estudiar el comportamiento epidemiológico de esta variante desde su reconocimiento en el país.
S. flexneri atípicas – análisis PFGE PFGE- NotI: relación genética de aislamientos de S. flexneri atípicos y cepas de serotipos variantes X, Y and tipo 4. Dice (Opt:1.50%) (Tol 1.5%-1.5%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
100
90
PFGE-NotI 80
70
PFGE-NotI
Isolate serotype
State
Isolate Date
NotI-PFGE pattern S. flexneri
SF461/10
Jujuy
2010-01-04
ARJZXN11.0019
Atypical
SF478/09
Neuquén
2009-07-01
ARJZXN11.0019
Atypical
SF564/09
Neuquén
2009
ARJZXN11.0019
Atypical
SF66/10
Jujuy
2009-11-20
ARJZXN11.0019
Atypical
SF1241/10 Salta
2010
ARJZXN11.0022
Atypical
SF412/09
2009
ARJZXN11.0012
Atypical
SF1460/10 Río Negro
2010-04-10
ARJZXN11.0028
Atypical
SF612/10
Río Negro
2010-02-09
ARJZXN11.0028
Atypical
SF617/10
Río Negro
2010-02-13
ARJZXN11.0028
Atypical
SF493/09
Neuquén
2009-07-01
ARJZXN11.0010
Atypical
SF479/09
Neuquén
2009
ARJZXN11.0006
Atypical
SF571/09
Neuquén
2009
ARJZXN11.0007
Atypical
SF2080/09 Neuquén
2009
ARJZXN11.0033
Atypical
Neuquén
SF730/09
Río Negro
2009-07-01
ARJZXN11.0026
SFB67X-1
ND
ND
ARJZXN11.0084
SF1004/09 Tucumán
2009-07-01
ARJZXN11.0045
Atypical
SF465/10
Jujuy
2010-05-05
ARJZXN11.0024
Atypical
SF294/09
Buenos Aires
2009
ARJZXN11.0080
Atypical
SF743/09
La Pampa
2009-07-01
ARJZXN11.0039
Atypical
SFB4a-1
ND
ND
ARJZXN11.0054
4a
SF472/09
La Pampa
SFB69Y-1
ND
ND
SF2029/09 Río Negro SFB4a-6
ND
SF1944/06 . CABA
* Shigella flexneri nomenclature updated. August, 2014
X variant X variant
ARJZXN11.0046
Y variant
ARJZXN11.0072
Y variant
ARJZXN11.0133
Y variant
ND
ARJZXN11.0044
4a
2006
ARJZXN11.0136
4a
m5 Caracterización m6
feno-genotípica de una selección de S. flexneri atípicas? Car. genotípica PCR Caracterización fenotípica Study of agglutination assay with:
S. flexneri Serotype 4a
Typing S. flexneri IV sera (INPB)
Typing S. flexneri IV sera (DS)
Grouping
+
+
+
3,4 sera (INPB & DS)
Grouping 6 sera (INPB & DS)
Grouping 7,8 sera (INPB & DS)
AA479 antisera
MASF IV-1 antisera
-
-
-
-
4a
+
+
+
-
-
-
-
4a
+
+
+
-
-
-
-
Y
-
-
+
-
-
-
-
Y
-
-
+
-
-
-
NR
Y
-
-
+
-
-
-
-
X
-
-
-
-
+
-
-
X
-
-
-
-
+
-
-
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
“atypical”
-
+
-
-
+
+
+
“atypical”
-
+
-
-
+
+
NR
Results of PCR a ssays
Biochemical assays:
Resistant to:
Acetate / mannitol / Indol
AMP-SXT
gtrIV
gtrX
set1-B
-/+/-/+/+/-/+ -/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/+ -/+/-/+/+ -/+/+ -/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-/+/-
S/S
+
-
-
-
S/S
+
-
-
+
R/R
+
-
-
+
S/S
-
-
+
+
S/R
-
-
+
+
S/S
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
S/S
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
-
+
R/R
+
NR: no determinado Mab MASF IV-1, Dr Kaisar Talukder, icddr,Bangladesh
sen
-
-
-
+
-
+
-
-
-
+
-
+
-
+
-
+
-
-
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
-
+
Diapositiva 18 m5
mpichel, 03/06/2013
m6
mpichel, 03/06/2013
Bases de la seroconversión en S. flexneri para diseño de PCR La adición de residuos glucosil, acetil o fosfoetanolamina a los ázúcares del antígeno-O resulta en determinantes antigénicos: de “tipo” (I, II, III, IV, V,VI) específicos de un serotipo de “grupo” (3,4; 6; 7,8; E1037) pueden estar presentes en mas de un serotipo.
* En su conjunto definen un serotipo y subserotipo
Gwen E. Allison and Naresh K. Verma, 2000, Trends in Microbiology
Serotipificación molecular: *Validación PCR Múltiple, con grupo colaborativo de trabajo compuesto por 5 laboratorios de referencia (USA, Inglaterra, Bangladesh, China, Hong Kong y Argentina). Set de muestras ensayadas incluyó aislamientos de distintas regiones y autóctonos de cada país. PCR múltiple para la identificación de todos los serotipos descriptos al 2014, incluyendo la variante de S. flexneri X (AA479)
Ye et al, JCM, 2012
Desde el LRN: Flujograma de PCR múltiple para serotipos de Sh. flexneri ( en desarrollo y validación ) PCR 1: a) Primer MIX 1: Contentración Target gene
Amplicon size (bp) en la Mix de primers
Concentración en la Serotype specificity reacción
wzx1-5
782
2 µM
0.2 µM
Todos excepto 6
gtrI
1122
2 µM
0.2 µM
1a, 1b, 1c
gtrII
1272
2 µM
0.2 µM
2a, 2b
oac
604
2 µM
0.2 µM
1b, 3a, 3b, 4b
gtrIV
378
2 µM
0.2 µM
4a, 4av, 4b
gtrV
905
2 µM
0.2 µM
5a, 5b
PCR 2: b) Primer MIX 2: Target gene
Amplicon size (bp)
Contentración en la Mix de primers
Concentración en la reacción
Serotype specificity
gtrX
425
2 µM
0.2 µM
2b, 3a, 5b, X, Xv
gtrIC
518
2 µM
0.2 µM
1C (propuesto como serotipo 7)
lpt-O
1098
4 µM
0.4 µM
Xv,Yv,4av
PCR como técnica alternativa al flujograma diagnóstico de Shigella flexneri
Validación intralaboratorio con cepas controles y autóctonas recibidas en el LRN
Implementación de PCR Múltiple para Shigella flexneri
PCR 1
gtrII 1272 pb oac 604 pb gtrIV 378 pb
PCR 2
gtrI 1122 pb gtrV 905 pb Wzx 1-5 782 pb
lpt-O 1098 pb gtrIC 518 pb gtrX 425 pb
M marcador de peso molecular 100 pb
Cepas control para PCR Múltiple para S. flexneri (validación interlaboratorio) PCR 1 (arriba) y PCR 2 (abajo) Calle 2
S. flexneri 1b CDC_China 45
gtrI, wzx1-5, oac
Amplicons sizes (bp) 1222, 782, 604
3
S. flexneri 2b CDC_China 46
gtrII, wzx1-5, gtrX
1272, 782, 425
4
S. flexneri 4b CDC_China 47
wzx1-5, gtrIV, oac
782, 604, 378
5
gtrV, wzx1-5, oac
905, 782, 604
lpt-O, wzx1-5, gtrX,
1098, 782, 425
8
S. flexneri 5a CDC_China 48 S. flexneri CDC_China 49 Xv S. flexneri Ic HPA, UK_1C
gtrI, wzx1-5, gtrIC
1122, 782, 518
9
S. flexneri 6
wzx6
739
7
Strain
Controles
CDC_China 50
Genes
Estudios epidemiológicos señalan al agua como fuente de infección, vegetales crudos, frutas, mariscos , manipulador de alimentos, etc. Sobrevida en el agua es limitada (horas a días) , depende de la cantidad de contaminación, temperatura del agua (susceptible a clorinación, luz UV )
Requerimiento de Técnicas sensibles para la detección en muestras de agua
Métodos rápidos: Ensayos de PCR estandarizados para Shigella spp. para muestras Nombre de la Técnica
Blanco
Método
PCR simple Prueba de tamizaje
PCR Shigella spp. / EIEC (E. coli enteroinvasivo)
ipaH ( Antígeno plasmídico de invasión) (Hartman et al,1990)
Tipo de muestra
Requerimientos. Especificidad / Tiempo de Sensibilidad procesamiento Muestras de agua y Detección en E: Shigella spp. cepa aislada muestras de agua a /EIEC partir de caldo de enriquecimiento GN, luego de 18 h de incubación a 37°C Detección preliminar del aislamiento a partir de TSA, luego de 24 h de incubación a 37°C
PCR a partir de caldo GN el gen ipaH
* codifica una proteína involucrada en el proceso de invasión de las células epiteliales y está presente en varias copias en el plásmido de 140 MDa de Shigella spp. y a nivel cromosomal, presente en aislamientos de E. coli enteroinvasivo (EIEC)
1
2
3
4
5
6
7
8
9 10 11 12 13 14 M
ipaH 619 pb
Fig 1. Gel de electroforesis de PCR ipaH a partir de caldo de enriquecimiento de muestras de agua inoculadas experimentalmente. Calle 1: agua sin inocular, Calle 2: 1- 10UFC (fallo amplificación, pero en este punto tuvimos problemas con el filtro y perdimos muestra), Calle 3: 10-100 UFC, Calle 4: 100-1000 UFC, Calle 5: Shigella flexneri 4a (1944/06), cepa Control positivo , Calle 6: agua sin inocular , Calle 7: 1- 10UFC con tritón (fallo amplificación), Calle 8: 10-100 UFC con tritón, Calle 9: 100-1000 UFC con tritón, Calle 10: Shigella flexneri 4a (1944/06), cepa Control positivo., Calle 11: Shigella flexneri, cepa control positivo, Calle12: Shigella flexneri, cepa Control positivo, Calle13: Shigella flexneri, cepa control positivo, Calle 14: Control de reactivos
* Se notificaron al LRN 2009 al 2014:
• Brotes: 17 de Shigella sonnei y 14 de Shigella flexneri
• De los brotes estudiados se recuperó de: crema de almendras y se sospechó de agua de red, verdura entre otros.
• 2009
Se implementó un estudio prospectivo para detección temprana de brotes en colaboración con la Univ de Harvard, USA (Proyecto MIDAS) en seis provincias de la región centro-sur.
* En Desarrollo y proyectos futuros La transferencia en el marco de la RND de una PCR validada para serotipificación molecular de Shigella flexneri ( 2, 1, 3, 4, 5 y 6 ,variante X e Y ;inclusive plásmido gen lpt-O; S. flexneri AA479).
Incorporación de S. flexneri atípica en la taxonomía con una nueva nomenclatura según consenso a nivel internacional: Shigella flexneri nomenclature updated. Scheme for serotypes designation based on the use of monoclonal and polyclonal antisera and PCR. Proposals of Dr. Kaisar, Dr. Xu and Dr. Sun to be discussed by the working group Aug, 2014
Shigella flexneri Xb? Secuenciación de nuevas variantes emergentes
Los aislamientos presentaron un perfil fenotípico atípico para S. sonnei,
negativos para la prueba de ONPG (o-nitrofenil-β-D-galactopiranósido) Shigella sonnei, recuperados de Febrero y Marzo del 2013 en la ciudad de Trelew, provincia de Chubut. PF GE-Xb aI 1 00
90
PFGE-XbaI
Nº aislamiento
Origen
Fecha aislamiento
Sexo
Nº patrón
Tipificación
SS418/13 Stool
Hum an
2 013-03- 03
MAL E
3
AR J16 X01.0078
B gal (-)
SS419/13 Stool
Hum an
2 013-03- 04
MAL E
2
AR J16 X01.0078
B gal (-)
SS200/13 Stool
Hum an
2 013-03- 16
FEM ALE
2
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS202/13 Stool
Hum an
2 013-02- 13
MAL E
2
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS206/13 Stool
Hum an
2 013-02- 17
MAL E
4
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS207/13 Stool
Hum an
2 013-02- 19
MAL E
7
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS413/13 Stool
Hum an
2 013-02- 25
MAL E
4
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS414/13 Stool
Hum an
2 013-02- 27
MAL E
8
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS415/13 Stool
Hum an
2 013-02- 28
MAL E
5
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS416/13 Stool
Hum an
2 013-02- 28
MAL E
7
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS417/13 Stool
Hum an
2 013-03- 01
MAL E
8
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS424/13 Stool
Hum an
2 013-03- 12
FEM ALE
8
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS425/13 Stool
Hum an
2 013-03- 13
MAL E
6
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS426/13 Stool
Hum an
2 013-03- 16
FEM ALE
12
AR J16 X01.0047
B gal (-)
SS420/13 Stool
Hum an
2 013-03- 04
FEM ALE
5
AR J16 X01.0406
B gal (-)
SS204/13 Stool
Hum an
2 013-02- 15
FEM ALE
4
AR J16 X01.0408
B gal (-)
SS423/13 Stool
Hum an
2 013-03- 09
MAL E
11
AR J16 X01.0407
B gal (-)
Figura 1. Dendograma de relación genética de aislamientos de S. sonnei ONPG (neg) de origen humano recuperados en Trelew en febrero y marzo de 2013. Se recuadran los aislamientos con el mismo patrón de PFGE. PFGE con XbaI. El patrón ARJ16XO1.0047,
14% de frecuencia en la BDN, subtipo genético que incluyó aisl. de distintas provincias del país y de distintos años, entre ellas Catamarca 2012; Buenos Aires 2008,2011 y 2012; Córdoba 2010 y 2012; La Pampa 2009; Neuquén 2009; Salta 2005; Jujuy 2011 y Río Negro 2009.
S. sonnei asociados a un brote familiar: PFGE demostró la relación genética entre los aislamientos, confirmó el estudio epidemiológico que evidenció la exposición de los pacientes a una misma fuente de infección:
Aislamiento de la cubierta de crema de almendras (una rosca vienesa de elaboración artesanal) PP FG E-B lnI ba I FG E -X
Nº aislamiento Ciudad
Origen
F. aislamiento
Patrón XbaI
S S 1 3 92 /12
Lu ja n
H u ma n 2 01 2 -0 7 -0 9
A R J 1 6X 01 .03 7 0
S S 1 3 93 /12
Lu ja n
H u ma n 2 01 2 -0 7 -0 9
A R J 1 6X 01 .03 7 0
S S 1 3 94 /12
Lu ja n
H u ma n 2 01 2 -0 7 -1 2
A R J 1 6X 01 .03 7 0
S S 1 3 95 /12
Lu ja n
H u ma n 2 01 2 -0 7 -1 2
A R J 1 6X 01 .03 7 0
S S 1 3 96 /12
Lu ja n
H u ma n 2 01 2 -0 7 -1 2
A R J 1 6X 01 .03 7 0
S S 1 3 97 /12
Lu ja n
Fo o d
A R J 1 6X 01 .03 7 0
2 01 2 -0 7 -0 8
Figura 1. Dendograma de relación genética de aislamientos de S. sonnei recuperados en Luján en julio
de 2012 con XbaI. Todos los aislamientos mostraron 100% de similitud.
Esto fue posible por la oportunidad en la investigación del brote y en la toma de muestras
Figure . Dendrogram showing the genetic relatedness of S. sonnei SXT resistant isolates included in the Event 7.
Evento en la comunidad
Figure 3. Dendrogram showing the genetic relatedness of S. sonnei SXT resistant isolates included in the Event 7. Isolates recovered in Santa Rosa, La Pampa in January – February 2010. The rectangle highlights the 7 S. sonnei isolates with an indistinguishable PFGE pattern which had not previously been recorded in the National Data Base (NDB). The remaining 7 isolates identified statistically and epidemiologically as part of Event 7, exhibited high genetic relatedness (from 91.4 to 97.4% similarity, 1 to 3 bands of difference) to the most frequent pattern within the event, confirming the relation of the cases. http://www.plosntd.org/article/info:doi/10.1371/journal.pntd.0002521