UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO Facultad de Medicina Departamento de Microbiología y Parasitología
XI DIPLOMADO DE MICOLOGÍA MÉDICA
“DR. A. RUBÉN LÓPEZ MARTÍNEZ” Del 6 de junio al 1 de julio de 2016
PROGRAMA Profesor Titular:
Dra. Francisca Hernández Hernández
Profesores Adjuntos:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Dr. Luis Javier Méndez Tovar
DIRECTORIO
FACULTAD DE MEDICINA
Dr. Rubén Argüero Director
Dra. Rosalinda Guevara Guzmán Secretaria General
Dr. Pelayo Vilar Puig Jefe de la División de Estudios de Posgrado
Dr. Samuel Ponce de León Jefe de la División de Investigación
Lic. Graciela Zúñiga González Secretaria Administrativa
Dr. Melchor Sánchez Mendiola Secretaría de Educación Médica
Dr. Alberto Lifshitz Guinzberg Secretaría de Enseñanza Clínica e Internado Médico
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COORDINACIÓN DE EDUCACIÓN MÉDICA CONTINUA
Dr. Julio M. Cacho Salazar Subdivisión de Educación Continua
Dr. Melchor Sánchez Mendiola Secretaría de Educación Médica
DEPARTAMENTO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA
Dra. Paz María Salazar Schettino Jefa del Departamento
Dr. Javier Rolando Ambrosio Hernández Coordinador de Investigación
Q.F.B. Yolanda García Yáñez Coordinadora de Enseñanza
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LABORATORIO DE MICOLOGÍA MÉDICA COLABORADORES
Dr. Rubén López Martínez Jefe del Laboratorio. Profesor Titular “C” T.C.
Dra. Francisca Hernández Hernández Profesora Titular “B” T.C.
Dra. Laura Rosio Castañón Olivares Profesora Titular “A” T.C.
Dra. Patricia Manzano Gayosso Profesora Titular “A” T.C.
Biól. Elva Bazán Mora Técnica Académica Asociada “C” T.C.
Q.F.B. Érika Córdova Martínez Técnica Académica Asociada “B” T.C.
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PROFESORES
Dr. Aarón Vázquez Hernández. Hospital de Especialidades, Centro Médico Nacional Siglo XXI, Instituto Mexicano del Seguro Social, México, D. F.
Dra. Adriana Montoya Esquivel. Centro de Investigación en Ciencias Biológicas y Posgrado en Ciencias Biológicas, Universidad Autónoma de Tlaxcala.
M. en C. Alexandro Bonifaz Trujillo. Servicio de Dermatología, Hospital General de México, O.D., México, D. F.
M. en C. Alejandra Espinosa Texis. Centro de Investigaciones en Ciencias Microbiológicas, Benemérita Universidad Autónoma de Puebla, Puebla.
Dra. Alicia Lemini López. Hospital General de Zona No. 8, Instituto Mexicano del Seguro Social, México D. F.
Dr. Aureliano Castillo Solana. Hospital General de Acapulco, Acapulco, Guerrero.
Dra. Carolina Segundo Zaragoza. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, México, D. F.
Dra. Conchita Toriello Nájera. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F. Dr. Edoardo Torres Guerrero. Hospital General “Dr. Manuel Gea González”, S.S., México D. F.
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Biol. Elva Bazán Mora. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Q.F.B. Érika Córdova Martínez. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dra. Francisca Hernández Hernández. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dr. Gastón Guzmán. Instituto de Ecología, A.C., Xalapa, Ver.
Dr. Gerardo Mata Montes de Oca. Instituto de Ecología, A.C., Xalapa, Ver.
Dra. Gisela Navarrete Franco. Centro Dermatológico Dr. Ladislao de la Pascua.
Dra. María de Guadalupe Chávez López. Hospital General de Acapulco, Acapulco, Gro. Universidad Autónoma de Guerrero, México.
Dr. Héctor Manuel Barragán Campos. Unidad de Resonancia Magnética. Instituto de Neurobiología, Universidad Nacional Autónoma de México, Campus Juriquilla, Querétaro, Qro.
Q.F.B. Israel Silva González. Hospital de Especialidades, CMN Siglo XXI, IMSS.
Q.F.B. Javier Araiza Santibañez. Hospital General de México, S.S., México, D. F.
Dra. Josefina Carbajosa Martínez. Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubirán, México D. F.
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Biól. Jorge Mayorga. Instituto Dermatológico de Jalisco Dr. José Barba Rubio, Guadalajara, Jal.
Dra. Laura Castrillón Rivera. Universidad Autónoma Metropolitana, Unidad Xochimilco, México D. F.
Dra. Laura Rosio Castañón Olivares. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dr. Leonel del Rivero. Servicio de Inmunología y Alergología, Hospital de Especialidades, Centro Médico Nacional Siglo XXI, Instituto Mexicano del Seguro Social, México, D. F.
Dr. Lucio Vera Cabrera. Facultad de Medicina, Universidad Autónoma de Nuevo León, N. L.
Dr. Luis Javier Méndez Tovar. Hospital de Especialidades, Centro Médico Nacional Siglo XXI, Instituto Mexicano del Seguro Social, México, D. F.
Dra. Magda Carvajal Moreno. Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dra. Margarita Villegas Ríos. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dra. María del Carmen Padilla Desgarennes. Centro Dermatológico Dr. Ladislao de la Pascua, México D. F.
Dra. María de los Ángeles Martínez Rivera. Escuela Nacional de Ciencias Biológicas, I.P.N., México D. F.
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Dra. María Lucia Taylor Da Cunha E Mello. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D.F.
Dra. Marina Romero Navarrete. Hospital General de Acapulco, S.S., Acapulco, Gro.
Dr. Oliverio Welsh Lozano. Facultad de Medicina, Universidad Autónoma de Nuevo León, N. L.
Dra. Patricia Manzano Gayosso. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F. Dr. Ramón Felipe Fernández. Hospital General “Manuel Gea González”, S.S., México, D. F.
Dr. Roberto Arenas Guzmán. Hospital General Dr. Manuel Gea González, S.S., México D. F.
Dr. Roberto Cervantes Olivares. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, México, D. F.
Dr. Roberto Estrada Castañón. Hospital General de Acapulco, Acapulco, Gro. Universidad Autónoma de Guerrero, México.
Dra. Rocío Orozco Topete. Instituto Nacional de Ciencias Médicas y Nutrición Salvador Zubirán, México D. F.
Dr. Rubén López Benítez.
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Dr. Rubén López Martínez. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F.
Dr. Sigfrido Sierra Galván. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, México D. F. Dr. Víctor M. Tarango Martínez. Instituto Dermatológico de Jalisco “Dr. José Barba Rubio”, Guadalajara, Jal.
Dra. Virginia Vanzzini Zago. Asociación para Evitar la Ceguera en México Dr. Luis Sánchez Bulnes, S.S., México D.F.
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SESIONES TEÓRICAS
Lunes 6 de junio 9:00 - 9:30
9:30 - 10:00
Inauguración Dra. Paz María Salazar Schettino Introducción al Curso de Micología Médica Dra. Francisca Hernández Hernández
MÓDULO I. GENERALIDADES DE HONGOS 10:00 - 11:30
Morfología general de los hongos Dra. Francisca Hernández Hernández
11:30 - 12:00
Receso
12:00 - 13:30
Estructura y fisiología de los hongos Dr. Luis J. Méndez Tovar
Martes 7 de junio 9:00 - 10:00
Taxonomía en la Micología Médica Dra. Margarita Villegas Ríos
10:00 - 11:00
Reproducción sexual Biól. Elva Bazán Mora
11:00 - 11:30
Receso
11:30 - 13:30
Reproducción asexual: conidiogénesis y esporangiosporogénesis Dra. Patricia Manzano Gayosso
Miércoles 8 de junio 9:00 - 10:30
Ecología de los hongos Dr. Sigfrido Sierra Galván
10:30 – 12:00
Campos de estudio de la micología Dr. Gerardo Mata Montes de Oca
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12: 00 - 12:30
Receso
12:30 - 13:30
Dimorfismo en los hongos patógenos Dra. Conchita Toriello Nájera
MÓDULO II. GENERALIDADES DE MICOLOGÍA MÉDICA
Jueves 9 de junio 09:00 - 10:30
Factores de virulencia y mecanismos de patogenicidad de los hongos Dra. Conchita Toriello Nájera
10:30 - 11:30
Técnicas de laboratorio para el diagnóstico micológico Q.F.B. Israel Silva González
11:30 - 12:00
Receso
12:00 - 13:30
La respuesta inmune en las micosis Dra. Laura Castrillón Rivera
MODULO III. MICOSIS SUPERFICIALES
Viernes 10 de junio 09:00 - 10:00
Propedéutica dermatológica Dr. Aarón Vázquez Hernández
10:00 – 11:00
Dermatofitos: ecología y morfología Dra. Patricia Manzano Gayosso
11:00 - 11:30
Receso
11:30 - 12:30
Dermatofitosis: epidemiología y cuadros clínicos Dr. Víctor M. Tarango Martínez
12:30 - 13:30
Dermatofitosis: diagnóstico de laboratorio y tratamiento Dra. Patricia Manzano Gayosso
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Lunes 13 de junio 09:00 - 10:00
Tiña negra y piedras Dra. Marina Romero Navarrete
10:00 - 11:00
El género Malassezia y patologías asociadas Dra. Francisca Hernández Hernández
11:00 – 11:30
Receso
11:30 – 12:30
Pitiriasis versicolor y dermatitis seborreica Dr. Luis Javier Méndez-Tovar
12:30 – 13:30
Diagnóstico diferencial de las micosis superficiales Dra. María del Carmen Padilla Desgarennes
Martes 14 de junio 9:00 - 10:00
Pseudomicosis superficiales Dr. Luis Javier Méndez Tovar
MÓDULO IV. MICOSIS SUBCUTÁNEAS 10:00 – 11:00
Histopatología de las micosis I Dra. Gisela Navarrete Franco
11:00 - 11:30
Receso
11:30 - 12:30
Histopatología de las micosis II Dra. Gisela Navarrete Franco
12:30 - 13:30
El género Sporothrix y epidemiología de la esporotricosis M. en C. Alejandra Espinosa Texis
Miércoles 15 de junio 09:00 – 10:00
Esporotricosis: clínica, diagnóstico y tratamiento Dr. Roberto Estrada
10:00 – 11:00
Micetoma: etiología y epidemiología Dra. Francisca Hernández Hernández
11:00 – 11:30
Receso 12
11:30 – 12:30
Micetoma: clínica y diagnóstico diferencial Dra. Guadalupe Chávez
12:30 – 13:30
Micetoma: diagnóstico de laboratorio e imagenología Dr. Edoardo Torres
Jueves 16 de junio 9:00 – 10:00
Micetoma: tratamiento Dr. Oliverio Welsh Lozano
10:00 – 11:00
Nocardiosis Dr. Lucio Vera Cabrera
11:00 – 11:30
Receso
11:30 – 12:30
Actinomicosis Dr. Luis J. Méndez Tovar
12:30 – 13:30
Cromoblastomicosis Alexandro Bonifaz
Viernes 17 de junio 9:00 – 10:00
Seminario
10:00 – 11:00
Conidiobolomicosis y basidiobolomicosis Biól. Jorge Mayorga
11:00 – 11:30
Receso
11.30 – 12:30
Sesión de casos clínicos Biól. Jorge Mayorga
MÓDULO V. MICOSIS SISTÉMICAS 12:30 – 13:30
El género Coccidioides Dra. Laura Rosio Castañón Olivares
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Lunes 20 de junio 9:00 – 10:00
Coccidioidomicosis: clínica, diagnóstico y tratamiento Dr. Roberto Arenas
10:00 – 11:00
Ecología de Histoplasma capsulatum y epidemiología de la histoplasmosis. Dra. María Lucia Taylor Da Cunha E Mello
11:00 – 11:30
Receso
11:30 - 12:30 h
Histoplasmosis: clínica, diagnóstico y tratamiento Dr. Rubén López Martínez
12:30 - 13:30 h
Paracoccidioidomicosis Dr. Ramón Fernández
MÓDULO VI. MICOSIS OPORTUNISTAS Martes 21 de junio 9:00 – 10:00
El género Aspergillus Dra. Rocío Reyes Montes
10:00 – 11:00
Aspergilosis Dr. Luis Javier Méndez Tovar
11:00 – 11:30
Receso
11:30 – 12:30
El género Candida Dra. Ma. de los Ángeles Martínez Rivera
12:30 – 13:30
Candidosis: clínica, diagnóstico y tratamiento. Dr. Roberto Arenas
Miércoles 22 de junio 09:00 – 10:00
Mucormicosis M. en C. Alexandro Bonifaz
10:00 – 11:00
El género Cryptococcus Dra. Laura Rosio Castañón Olivares
11:00 – 11:30
Receso
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11:30 – 12:30
Criptococosis QFB Javier Araiza Santibañez
12:30 – 13:30
El género Pneumocystis Dra. Francisca Hernández Hernández
Jueves 23 de junio 9:00 – 10:00
Neumocistosis Dra. Francisca Hernández Hernández
10:00 – 11:00
Hialohifomicosis y Feohifomicosis Dra. Patricia Manzano Gayosso
11:00 – 11:30
Receso
MÓDULO VII. TEMAS SELECTOS DE MICOLOGÍA MÉDICA 11:30 – 12:30
Micetismos faloidiano, muscarínico, inconstante y gastrointestinal Dra. Adriana Montoya Esquivel
12:30 – 13:30
Micetismo cerebral Dr. Gastón Guzmán
Viernes 24 de junio 09:00 – 10:00
Blastomicosis Dr. Leonel Mendoza
10:00 – 11:00
Fundamentos de Biología Molecular aplicada a la Micología Médica I Dr. Leonel Mendoza
11:00 – 11:30
Receso
11:30 - 12:30
Fundamentos de Biología Molecular aplicada a la Micología Médica II Dr. Leonel Mendoza
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12:30 – 13:30
Hongos contaminantes Dr. Francisca Hernández Hernández
Lunes 27 de junio 9:00 - 10:00 h
Micotoxicosis Dra. Magda Carvajal Moreno
10:00 - 11:00 h
Micosis de manejo quirúrgico Dra. Josefina Carbajosa
11:00 - 11:30 h
Receso
11:30 - 12:30 h
Micosis en pacientes con inmunodeficiencias Dra. Rocío Orozco Topete
12:30 – 13:30
Presentación de tesinas I
Martes 28 de junio 9:00 – 10:00
Micosis en animales y su transmisión al humano Dr. Roberto Cervantes Olivares
10:00 – 11:00
Manejo de animales de bioterio en Micología Médica M.V.Z. Claudia Rivera Cerecedo
11:00 - 11:30 h
Receso
11:30 – 12:30
Micosis oculares Dra. Virginia Vanzzini Zago
12:30 – 13:30
Presentación de tesinas II
Miércoles 29 de junio 9:00 – 10:00
La Epidemiología como herramienta de estudio en la Micología Dr. Aureliano Castillo Solana
10:00 – 11:00
Alergias por hongos Dr. Leonel del Rivero
11:00 – 11:30
Receso
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11:30 – 12:30
Seminario
12:30 – 13:30
Presentación de tesinas III
Jueves 30 de junio 09:00 – 10:00
Antimicóticos Dra. Alicia Lemini López
10:00 - 11:00
Métodos de estudio in vitro de la sensibilidad a los antifúngicos Dra. Patricia Manzano Gayosso
11:00 – 11:30
Receso
11:30 – 12:30 h
La Bioseguridad en el Laboratorio de Micología QFB Érika Córdova Martínez
12:30 - 13:30 h
Historia de la Micología Médica en México Dr. Rubén López Martínez
Viernes 1 de julio 10:00 – 11:00
La Imagenología en Micología Médica Dr. Rubén López Benítez
11:00 – 11:30
Fotografía de grupo
11:30 – 12:30
Homenaje al Dr. Rubén López Martínez
12:30 – 13:30
Dr. Roberto Arenas (La amistad)
15 min
Dr. Luis Javier Méndez-Tovar (La Academia)
15 min
Dr. Rubén López Benítez (La familia)
15 min
Dr. Rubén López Martínez
15 min
Entrega de Diplomas y Clausura
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SESIONES PRÁCTICAS LABORATORIO 4 (Edificio A, Primer piso) PRIMERA SEMANA Lunes 6 de junio MORFOLOGIA GENERAL DE LOS HONGOS Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Dra. Patricia Manzano Gayosso
Actividades: 1. Procedimientos generales para la identificación de los hongos. 2. Estudio macroscópico de diferentes colonias fúngicas: Colonia algodonosa (Trichophyton rubrum, Monilia sp.) Colonia costrosa, membranosa (Sporothrix schenckii) Colonia aterciopelada (Cladophialophora sp.) Colonia levaduriforme (Candida sp., Rhodotorula sp.) Colonia pulverulenta (Penicillium sp.) Colonias productoras de pigmento (M. mycetomatis) 3. Hacer un frotis de una levadura y teñirlo con Gram. 4. Observación microscópica del talo filamentoso (multicelular) y del talo levaduriforme (unicelular) de los cultivos proporcionados 5. Observación microscópica de diferentes modalidades de filamentos: Hifas septadas e hifas no septadas: Cladophialophora sp. y Mucor sp. Hifas en espiral: Trichophyton mentagrophytes Hifas moniliformes: Monilia sp. 6. Identificación de otras estructuras frecuentes en diversos hongos: Vesículas: Madurella mycetomatis Clamidoconidios: C. albicans Pseudomicelio: C. albicans 7. Hacer un sub-cultivo de C. albicans y Monilia sp. en ADS con y sin antibiótico. 8. Tomar muestra del oído externo para el aislamiento de Malassezia sp.; sembrarla en agar Dixon e incubarla a 32°C. Revisar este cultivo el martes 14. 18
Martes 7 de junio CONIDIOGÉNESIS Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso QFB. Erika Córdova Martínez
Actividades: 1. Observación de los diferentes tipos de conidiación: Conidiación blástica solitaria: Trichophyton sp. Conidiación blástica acrópeta: Cladophialophora sp. Conidiación blástica simpodial: Beauveria sp, S.schenckii Conidiación enteroblástica fialídica: Penicillium sp. Conidiación blástica anelídica: Scopulariopsis sp. Conidiación blástica retrogresiva: Trichothecium roseum Conidiación tálica ártrica: Geotrichum sp. Conidiación tálica solitaria: Microsporum gypseum 2. Observación de diferentes agregaciones miceliales: Esclerotes: Madurella mycetomatis Coremios (sinemas): Penicillium clavatus 3) Hacer un micro-cultivo de alguno de los siguientes aislados: Trichopyton sp, Penicillium, Scopulariopsis.
Miércoles 8 de junio REPRODUCCION SEXUAL Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernandez Biól. Elva Bazán Mora T.L.C. David Velasco Perales
Actividades: 1. Observación microscópica de las siguientes estructuras: Ascas y ascosporas de Saccharomyces cerevisiae con tinción verde de malaquita. Peritecios, ascas y ascosporas en Sordaria fimicola. Cleistotecios, ascas y ascosporas en Talaromyces sp, (P. crysogenum). Apotecios (ascas con ascosporas) en Morquella sp. 19
Fíbulas en el micelio de Pleurotus sp. Basidios y basidiosporas en Agaricus sp. y Pleurotus sp. Cigosporas (zigosporas) en Mucor sp. y Zygorhynchus sp.
2. Fundamento teórico de las tinciones histológicas 3. Realizar preparaciones permanentes de microcultivos.
Jueves 9 de junio ESPORANGIOSPOROGÉNESIS Responsables:
Dr. Luis Javier Méndez Dra. Laura Rosio Castañón T.L.C. David Velasco Perales
Actividades: 1. Observación macroscópica de Rhizopus sp., Mucor sp., Absidia sp., Cunninghamella sp. y Syncephalastrum sp. 2. Observación microscópica de las estructuras características de Rhizopus sp., Mucor sp., Absidia sp., Cunninghamella sp. y Syncephalastrum sp. 3. Diferenciar microscópicamente las siguientes estructuras: esporangios, esporangiolos, merosporangios, columela, estolones, rizoides y vesículas. 4. Revisar y en caso necesario desmontar los micro-cultivos hechos durante la segunda práctica; contrastarlos con azul de algodón. 5. Realizar una tinción de PAS, en corte de tejido proporcionado.
Viernes 10 de junio FUNDAMENTOS DE HISTOPATOLOGIA Responsables:
Dr. Luis Javier Méndez Tovar Dra. Francisca Hernández Hernández
Actividades: 1. Observar cortes histopatológicos. 2. Diferenciar las tinciones de hematoxilina-eosina (HE), Grocott y ácido peryódico de
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Schiff (PAS). 3. Observar e identificar la reacción tisular de un proceso inflamatorio, de un proceso granulomatoso, de un absceso y de un proceso fibrótico en cortes con diversas micosis. 4. Sembrar 2 especies de Malassezia y una de Candida en agar urea y en agar Dixon; incubar a 32°C. Revisar el martes 14. 5. Explicar procedimiento de toma de muestras de uñas, piel o pelo. Los alumnos deberán traer especímenes biológicos el próximo lunes 13.
SEGUNDA SEMANA Lunes 13 de junio DERMATOFITOS Y DERMATOFITOSIS Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Q.F.B. Érika Córdova Martínez
Actividades: 1. Procedimientos para la obtención de pelo, escamas de uñas y de piel parasitados. 2. Procesamiento de especímenes para el examen microscópico y cultivo de pelos, uñas y escamas parasitados. 3. Observación de las colonias de dermatofitos: Microsporum canis, Trichophyton mentagrophytes, T. tonsurans, Epidermophyton floccosum, M. gypseum. 4. Observación microscópica de los cultivos de dermatofitos proporcionados. 5. Observación macro y microscópica de las variedades de Trichophyton rubrum. 6. Hacer un microcultivo de dos de los dermatofitos de interés médico. 7. Observación de pelo infectado in vitro con T. rubrum y T. mentagrophytes.
Martes 14 de junio MALASSEZIA SPP. Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Biól. Elva Bazán Mora 21
Actividades: 1. Observación microscópica de escamas de pacientes con pitiriasis versicolor y dermatitis seborreica. 2. Del cultivo hecho a partir de oído externo observar las colonias sugestivas de Malassezia y resembrarlas en Caldo Dixon; incubar a 32°C. Revisar estos cultivos el martes 21. 3. Observación macroscópica de cultivos de Malassezia spp. 4. Realizar la tinción de Gram a partir de cultivos proporcionados en caldo Dixon. 5. Observar la prueba de ureasa incubada el viernes 10. 6. Hacer la prueba de catalasa a los aislados proporcionados de Malassezia spp.
Miércoles 15 de junio ESPOROTRICOSIS Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Q.F.B. Érika Córdova Martínez
Actividades: 1. Observación macro y microscópica de cultivos de Sporothrix spp. Comparar morfología similar de otras especies. 2. Observar levaduras de S. schenckii producidas en caldo BHI; hacer un frotis y teñirlo con Gram. 3. Examinar cortes histológicos de tejidos con esporotricosis.
Jueves 16 de junio MICETOMA Responsables:
Dra. Laura Rosio Castañón Olivares Dr. Luis Javier Méndez-Tovar
Actividades: 1. Examen directo de granos de pacientes con micetoma. 2. Observación macroscópica de cultivos de Nocardia asteroides, N. brasiliensis, N. thraciensis, A. madurae, A. pelletieri. 22
3. Hacer un frotis a partir de los cultivos anteriores (Nocardia sp y Actinomadura sp) y teñirlos con Kinyoun (Ziehl-Neelsen modificado) y Gram; observarlos al microscopio. 4. Observación macro y microscópica de los hongos causantes de micetoma: Madurella grisea, M. mycetomatis, Pyrenochaeta romeroi y Scedosporium apiospermum. 5. Observación microscópica de cortes histológicos de pacientes con micetoma. 6. Observar los medios de caseína, xantina, hipoxantina, urea y gelatina inoculados con N. asteroides, N. brasiliensis y N. thraciensis.
Viernes 17 de junio CROMOBLASTOMICOSIS Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Dr. Luis Javier Méndez Tovar
Actividades: 1. Observación de escamas de pacientes con cromoblastomicosis. 2. Examen microscópico de cortes histológicos de pacientes con cromoblastomicosis. 3. Examen macro y microscópico de cultivos de Fonsecaea pedrosoi, Phialophora verrucosa, Cladophialophora carrionii y Rhinocladiella sp.
TERCERA SEMANA Lunes 20 de junio COCCIDIOIDOMICOSIS, CONIDIOBOLOMICOSIS Y BASIDIOBOLOMICOSIS Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández QFB. Erika Córdova Dr. Rubén López Martínez
Actividades: 1. Observación de cortes de tejido infectado con Coccidioides sp. 2. Observación macro y microscópica de cultivos (inactivados con formalina) de Coccidioides sp. 3. Inocular Cryptococcus spp y Candida sp en agar urea y en agar Staib (niger) e incubar a 23
30°C. Revisar el próximo jueves 23. 4. Inocular Cryptococcus neoformans y C. gattii en agar canavanina-azul de bromotimol. Se revisará el próximo jueves 23.
Martes 21 de junio PARACOCCIDIOIDOMICOSIS, HISTOPLASMOSIS Y MUCORMICOSIS Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Dra. Francisca Hernández Hernández
Actividades: 1. Observación de cortes histológicos de pacientes con paracoccidioidomicosis e histoplasmosis. 2. Observación macro y microscópica de cultivos de Histoplasma capsulatum (inactivados con formalina). 3. Aplicación de intradermorreacciones: histoplasmina, coccidioidina, candidina. 4. Inocular placas de agar Staib, agar tabaco, agar harina de maíz y agar urea con las levaduras proporcionadas. La lectura se realizará el próximo viernes 24. 5. Observación macro y microscópica de cultivos de Mucor sp, Rhizopus sp, Absidia sp, Cunninghamella sp. 6. Observación de cortes histológicos con zigomicosis. 7. Revisar cultivos de Malassezia en caldo Dixon (hechos el martes 14). Realizar tinción de Gram.
Miércoles 22 de junio CANDIDA SPP., CANDIDOSIS Y PRUEBA DE SENSIBILIDAD A ANTIFÚNGICOS I Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Biól. Elva Bazán Mora Biól. Juan José Campos Anaya
Actividades: 1. Observar la morfología de cultivos levaduriformes en agar dextrosa Sabouraud. 24
2. A partir de una suspensión de levaduras proporcionada, realizar un frotis y teñirlo con Gram. 3. Inocular 10 µl de la misma suspensión en medio cromógeno (ChromID Candida) y distribuirla por estría separada. Incubar en oscuridad 48 h a 37°C. 4. A partir de un exudado de paciente o de individuo sano, hacer un frotis con tinción de Gram. 5. A partir de escamas proporcionadas, hacer un examen directo con KOH. 6. Dividir en dos partes una placa de agar Dextrosa Sabouraud con y sin antibióticos, e inocularla por estría cerrada con las cepas A y B. Incubar por 48 h a 30°C. 7. Prueba de sensibilidad a antifúngicos. Seguir las instrucciones dadas durante la práctica. 8. Auxanograma por el método API-20 C Aux. Seguir las instrucciones dadas durante la práctica.
Jueves 23 de junio CRYPTOCOCCUS SPP. Y CRIPTOCOCOSIS Responsables:
Dra. Laura Rosio Castañón Olivares Q.F.B. Érika Córdova Martínez
Actividades: 1. Examen macroscópico de colonias de Cryptococcus spp. 2. Examen microscópico de Cryptococcus spp. contrastado con tinta china. 3. Diferenciar C. neoformans de C. laurenti inoculados en agar Staib (níger). 4. Diferenciar las especies C. neoformans y C. gatti en agar canavanina-azul de bromotimol (cultivo del lunes 20 de junio). 5. Observación microscópica de cortes de tejido infectado con C. neoformans. 6. Observar la prueba de ureasa de C. neoformans (cultivo del lunes 20). 7. Sembrar diversas semillas y cereales en agar malta sal e incubar a temperatura ambiente. Observar el lunes 27. 8. Mantener abierta durante 10 minutos una placa de agar Sabouraud por persona, en un
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punto diferente de las instalaciones en que se encuentra e incubarlas a temperatura ambiente. El lunes 27, identificar los géneros crecidos.
Viernes 24 de junio CANDIDA SPP., CANDIDOSIS Y PRUEBA DE SENSIBILIDAD A ANTIFÚNGICOS II Responsables:
Dra. Patricia Manzano Gayosso Dr. Luis Javier Méndez Tovar Biól. Juan José Campos Anaya
Actividades: 1. Realizar la prueba de filamentación en suero con las cepas A y B proporcionadas. Para ello, inocular cada cepa en un tubo conteniendo 0.5 ml de suero humano; incubar 2 h a 37°C y hacer un examen microscópico. 2. Observación macroscópica de cultivos realizados el martes 21 en agar Staib, en agar harina de maíz-Tween 80, agar urea, agar tabaco y en medio cromógeno. 3. Hacer examen microscópico a partir de los cultivos en agar Staib, agar tabaco y agar harina de maíz-Tween 80 para la búsqueda de clamidoconidios, hifas y/o psudohifas. 4. Examinar cortes histológicos infectados con Candida albicans. 5. Hacer las lecturas de la Concentración Mínima Inhibitoria (CMI) del método de sensibilidad a antifúngicos. 6. Revisar el resultado de la prueba de Auxanograma realizada el miércoles 22 de junio.
CUARTA SEMANA Lunes 27 de junio ASPERGILOSIS Y HONGOS CONTAMINANTES Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Biól. Elva Bazán Mora
Actividades: 1. Observación macroscópica (microscopio estereoscópico) de cultivos de Aspergillus 26
flavus, A. fumigatus, A. niger, A. ochraceus, A. terreus, A. nidulans, A. clavatus. 2. Observación microscópica de los cultivos anteriores e identificar las cabezas aspergilares uniseriadas, biseriadas o mixtas. Diferenciar las paredes lisas u ornamentadas de los conidióforos y conidios. 3. Observación de cortes histológicos con aspergilosis. 4. Observar e identificar los cultivos obtenidos de semillas, cereales y ambiente realizados el jueves 23 de junio. 5. Observación macro y microscópica de Penicillium sp., Trichoderma sp., Scopulariopsis sp., Acremonium sp., Fusarium sp., Chrysosporium sp., Alternaria sp.
Martes 28 de junio TECNICAS DE DIAGNÓSTICO INMUNOLÓGICO Responsables:
Dr. Luis Javier Méndez Tovar Dra. Laura Rosio Castañón
Actividades: Diagnóstico inmunológico de: Candidosis Criptococosis Aspergilosis Las instrucciones serán dadas durante la práctica.
Miércoles 29 de junio BASES DE BIOLOGIA MOLECULAR I (Se dará instructivo) Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Dra. Patricia Manzano Gayosso QFB. Érika Córdova Martínez
Actividades: Extracción de ADN y ARN. Preparación de reacción para PCR.
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Jueves 30 de junio BASES DE BIOLOGIA MOLECULAR II (Se dará instructivo) Responsables:
Dra. Francisca Hernández Hernández Dra. Patricia Manzano Gayosso QFB. Érika Córdova Martínez
Actividades: Visualización del ADN y ARN extraídos. Visualización de productos de PCR.
Viernes 1 de julio
EVALUACIÓN GENERAL DEL CURSO Dra. Francisca Hernández Hernández, Dr. Luis Javier Méndez-Tovar, Dra. Patricia Manzano Gayosso, Dr. Rubén López Martínez, Dra. Laura Rosio Castañón-Olivares, Biól. Elva Bazán-Mora, QFB. Érika Córdova Martínez.
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